Placas Petri 90x15 mm Agar CLED 10 pzs
USO
El Agar CLED (por sus siglas en inglés cystine-lactose-electrolyte deficient) es utilizado para aislar, enumerar e identificación presuntiva de microorganismos en muestras de orina.
EXPLICACIÓN
Es una modificación de la fórmula desarrollada por Sandys, quien elaboró un medio deficiente en electrolitos, lo que ayudaba a evitar la formación de swarming por el género Proteus. Es un medio diferencial no selectivo utilizado para el cultivo y enumeración de microorganismos del tracto urinario. La falta de cloruro de sodio inhibe el swarming de las especies de Proteus y favorece el crecimiento de la gran mayoría de las bacterias que causan infecciones del tracto urinario. Las peptonas contenidas en el medio
proporcionan el nitrógeno, vitaminas y aminoácidos. La L-Cistina es añadida como suplemento para el crecimiento de coliformes cistina-dependientes. El azul de bromotimol es utilizado como indicador de pH y permite la diferenciación de microorganismos. Los organismos fermentadores de lactosa modifican el pH y favorecen el color del medio de verde a amarillo. El agar bacteriológico se usa como agente gelificante. Los microorganismos que causan infección en el tracto urinario son generalmente abundantes y de una sola especie. Escherichia coli es el microorganismo más frecuentemente aislado.
FÓRMULA POR LITRO
Lactosa 10.0 g
Extracto de carne 3.0 g
Peptona de gelatina 4.0 g
Azul de bromotimol 0.02 g
L-Cistina 0.128 g
Agar bacteriológico 15.0 g
Peptona de caseína 4.0 g
pH 7.3 ± 0.2 a 25°C
PREPARACIÓN
Suspender 36.1 gramos del medio en un litro de agua purificada. Mezclar bien y calentar con agitación suave hasta su completa disolución y hervir durante un minuto. No sobrecalentar. Esterilizar en autoclave a 121°C durante 15 minutos. Dejar enfriar a una temperatura entre 45-50°C y vaciar en placas de Petri estériles.
PROCEDIMIENTO
1. La siembra de la muestra puede hacerse por el método de dilución o por estría en la superficie del agar con un asa calibrada, de acuerdo a los procedimientos internos de laboratorio o normas aplicables. Para mejores resultados la inoculación en el medio debe ser lo más pronto posible después de la recolección de la muestra.
2. Incubar las placas a 35 ± 2°C. Contar las colonias después de 24 a 48 horas. Reportar el número de colonias/mL de muestra.